昆虫激素体外调节家蚕滞育激素受体基因的表达

第27卷第4期Vol畅27No畅4江苏科技大学学报(自然科学版)  Aug.20132013年8月      doi:10.3969/j.issn.1673-4807.2013.04.018

昆虫激素体外调节家蚕滞育激素受体基因的表达

王力刚,朱 娟,王 猛,唐顺明

1,2

,沈兴家

1,2

(1.江苏科技大学,江苏镇江212018)

(2.中国农业科学院蚕业研究所农业部蚕桑遗传改良重点实验室,江苏镇江212018)

摘 要:为了深入研究家蚕滞育的分子机理,从家蚕基因组中扩增了1395bp和972bp2个不同长度的滞育激素受体基因Bmdhr启动子片段,以pGL3畅0Basic为载体,分别构建荧光素酶报告质粒,利用家蚕细胞瞬时表达系统分析其转录活性以及昆虫保幼激素类似物(JHA)、蜕皮激素(20-OH-ecdysone)和滞育激素(DH)对其活性的影响.结果表明:1395bp的Bmdhr启动子活性显著低于972bp的Bmdhr启动子,这说明Bmdhr启动子在-941~-1364nt区间存在负调控元件.JHA浓度为2,4,6μg/mL时,极显著地增强启动子活性;浓度为1μg/mL时活性显著减弱,而为8μg/mL时则活性极显著减弱.20-OH-ecdysone对Bmdhr启动子活性的影响具有剂量效应,低浓度(1,2μg/mL)时显著增强启动子活性;浓度为4μg/mL时,启动其浓度为10~40nM时,显著增强启动子活性;而当其浓度达到60nM时,启动子活性变化不显著.关键词:昆虫激素;家蚕;滞育激素受体;启动子;基因表达调控

中图分类号:S881.2     文献标志码:A     文章编号:1673-4807(2013)04-0391-05

子的活性显著减弱;但当浓度继续升高时,启动子活性又极显著增强.DH对Bmdhr启动子活性的影响同样具有剂量效应,

Insecthormonesregulateexpressionofdiapausehormonereceptor

geneofthesilkworm(Bombyxmori)invitro

WangLigang,ZhuJuan,WangMeng,TangShunming

1,2

,ShenXingjia

1,2

(1.JiangsuUniversityofScienceandTechnology,ZhenjiangJiangsu212018,China)

ChineseAcademyofAgriculturalSciences,ZhenjiangJiangsu212018,China)

(2.KeyLaboratoryofSilkwormandMulberryGeneticImprovement,MinistryofAgriculture,SericulturalResearchInstitute,

Abstract:Tostudythemolecularmechanismofsilkworm(Bombyxmori)diapause,twoheterogeneouspromoter

fragments,1395bpand972bp,ofdiapausehormonereceptorgene(Bmdhr)wereclonedintopGL3畅0basicvectortoconstructreporterplasmids,respectively.Theeffectsofforeigninsecthormonesincludingjuvenilehormoneana-logue(JHA),20-OH-ecdysoneanddiapausehormone(DH)onregulationofBmdhrpromoteractivitieswereana-lyzedinBmNcells.Theresultsshowedthattheactivityof1395bppromoterfragmentwassignificantlylowerthanthatof972bpone,implyingthatthereisanegativeregulationelementbetween-941and-1364ntofBmdhrpro-moterregion.JHAof2,4and6μg/mLincreasedthepromoteractivityby1畅5~2畅1folds,butJHAof8μg/mLdecreasedthepromoteractivitysignificantly.TheeffectsofecdysoneontheBmdhrpromoteractivityrevealedadosagedependentprofile,lowconcentrationecdysone(1,2μg/mL)increasedthepromoteractivitysignificantly,ecdysoneof4μg/mLstronglysuppressedthepromoteractivity.Whenecdysoneconcentrationincreasedfrom6μg/mLto8and10μg/mL,thepromoteractivityrecoveredandincreasedsignificantlyagain.TheeffectsofDHre-vealedadosagedependentprofiletoo,lowconcentrationDH(10,20and40nM)significantlyenhancedthepro-moteractivity,buthighconcentrationDH(60to100nM)showednosignificanteffect.

Keywords:insecthormone;Bombyxmori;diapausehormonereceptor;promoter;regulationofgeneexpression

收稿日期:2013-03-08

基金项目:国家自然科学基金资助项目(31172266)作者简介:王力刚(1986—),男,硕士研究生.

通讯作者:沈兴家(1963—),男,研究员,博士生导师,研究方向为分子生物学与生物技术.E-mail:shenxjsri@163.com

  家蚕是一种重要的经济昆虫和模式生物,家蚕滞育机理研究一直受到学界的关注并取得了重要进[1-3]展.根据自然条件下1年内发生的世代数可将家蚕分为一化性(univoltinism)、二化性(bivoltinism)和多化性品种(polyvoltinism).不同化性的家蚕发生滞育的情况也不同,家蚕二化性品种的滞育性由遗

[4-6]

传性决定并受上代环境影响.滞育激素(DH)在

[4-5,7]

,胚胎期决定家蚕胚胎滞育中有着重要作用

25℃光照处理,至蛹期咽下神经节(SG)合成和分泌滞育激素DH,成虫交配后产滞育卵;相反,胚胎期照文献[10]的方法提取家蚕基因组DNA,经浓度和纯度检测后,-20℃保存备用.1畅3 启动子序列扩增

根据家蚕基因组数据库公布的Bmdhr序列(Bm-scaf84|BABH01033472畅1),使用Oligo6软

-3′,F25′CATGGACGA-3′,R5′-件分别在-1400bp和-1000bp左右设计上游引物,在+10bp处设计下游引物,并分别导入KpnⅠ和BglⅡ酶切位点(下划线部分):F15′15℃暗催青处理,SG合成和分泌的DH少,成虫交

配后产非滞育卵[8]

.研究表明:家蚕滞育激素受体基

因Bmdhr主要在蛹中期卵巢中表达[7]

,DH必须与滞育激素受体(BmDHR)结合,通过调控下游基因的

表达变化才能启动滞育

[6,9]

.但是,目前人们对Bm-dhr表达的调控机制尚不清楚.

为了深入研究家蚕滞育的分子机理,本实验根据家蚕基因组数据库公布的scafBmdhr二化性品种84|BABH01033472畅1)设计PCR上游序列引物,以家蚕(Bm-bp不同长度的(-1364“~+秋丰Bmdhr31”nt基因组DNA为模板,克隆了1395启动子序列)和972bp,(构建-941Bmdhr~+31启动子驱nt)2个动的荧光素酶基因报告载体,利用家蚕细胞瞬时表达分析系统分析其转录活性和外源昆虫保幼激素类似物(JHA)、蜕皮激素(20-OH-ecdysone)和滞育激素(DH)对其活性的影响.

1 实验

1畅1 实验试剂

Top家蚕二化性品种“秋丰”、宿主菌E.有荧光素酶基因10、质粒载体pMDluc)、18BmNT和细胞株由农业部蚕桑pGL3畅0basic载体(coli含遗传改良重点实验室保存one.蜕皮激素20-OH-ecdys-产并提供由中国农业科学院蚕业研究所附属蚕药厂生Sigma生物科技有限公司合成公司;保幼激素类似物;滞育激素(MW.各种限制性内切酶:2731畅(JHA)01)ZR由上海强耀-515购自、Taq酶TaKaRa、T4DNA连接酶、ProteinaseK等主要试剂购自基、胎牛血清(大连()FBS有限公司)、lipofectin.TC-100试剂购自昆虫细胞培养Invitrogen公司.荧光素酶检测试剂盒(E4030)购自Promega公司.核苷酸引物的合成、测序委托上海生工生物有限工程公司完成.1畅2 家蚕基因组DNA的提取

取家蚕品种秋丰5龄第3日幼虫后部丝腺,参

以家蚕基因组DNA为模板,进行PCR-3′.

扩增,扩增条件为min94℃预变性5min,94℃、45PCR,72℃、2剂盒纯化后克隆到产物经凝胶电泳鉴定和分离min,25个循环后72℃pMD18-T载体中,用延伸s,60℃、1,DNA10进行测序验回收试min.证.1畅4 载体构建

将测序正确的质粒使用KpnⅠ-BglⅡ内切酶双酶切后电泳,分离纯化获得不同长度的Bmdhr基因启动子片段,在T4DNA连接酶作用下克隆到经同样酶消化的Top10,筛选出重组质粒pGL3畅0BasicpGL-Bmdhr载体中1364-,转化luc、EpGL.coli-1Bmdhr畅5 细胞培养941-luc,并进行酶切鉴定、转染与瞬时表达

.家蚕细胞系BmN参照文献[11]的方法进行细胞培养传代.细胞用24孔板培养24h,转染前去除培养基并用无血清培养基洗涤2次,将100μL含有5μL脂质体和1μg报告质粒的转染液与1mL无血清TC-100培养基混匀,温育细胞4~5h,除去旧培养基,加入300μL含有10%FBS的TC-100培养基ZRddH515、β-,激素处理组更换培养基时加入不同浓度蜕皮激素和DH,对照组加等体积

2每组实验重复O,以pGL3畅

3次0.basic转染的细胞为空白对照,1畅6 荧光素酶分析

细胞转染72h后,4℃5000r/min离心5min收集细胞,去上清液,按照E4030试剂盒(promega)的说明裂解细胞.加100μL荧光素酶底物于测定管中minoMeter,然后加入(LUC)活性20(2/2020s延迟荧μL光的细胞裂解液并混匀,10光s度读数计),上以相对荧光强度

测定荧光,在素Lu酶-单位(relativeluminescenceunit,RLU)表示[12]

.平行测定细胞总蛋白浓度,以校正报告质粒的荧光素

酶活性值[13]

.使用SPSS软件进行差异性分析.

2 结果与分析

2畅1 不同长度Bmdhr启动子活性比较

经M13引物双向测序后,分别得到长度为1395bp和972bp的片段.2个启动子片段分别包含1364bp和941bp的5’上游序列,以及31bp的第1外显子部分序列.比对结果表明:克隆的片段与公布

BABH01033472畅1序列一致,说明的Bm-scaf84|

已成功克隆到Bmdhr启动子片段.

将构建好的报告质粒pGL-Bmdhr1364-luc、pGL-2畅3 20-OH-ecdysone对Bmdhr启动子活性的影响

  将构建好的报告质粒pGL-Bmdhr-1364和pGL3畅0basic质粒分别转染BmN细胞,转染4~5h后使用β-蜕皮激素浓度为0,1,2,4,6,8和10μg/mL的完全培养基替换旧培养基.72h后检测LUC活性,并经空载体和总蛋白量矫正,结果见图2.当β-蜕皮激素浓度为0时,Bmdhr基因启动子的活性为677±24畅33;当β-蜕皮激素浓度为1,2,6,8,10μg/mL时,启动子的活性增加极显著(F=85畅831,P=0畅001<0畅01),分别是浓度为0时的Bmdhr941-luc和pGL3畅0basic质粒分别转染BmN细胞h,转染4量矫正后收集细胞~5h后使用完全培养基替换旧培养基.72,结果见表,检测1.LUC从表中可看出活性,并经空载体和总蛋白,Bmdhr-941启动子活性明显高于Bmdhr-1364启动子,前者是后者的2畅1倍,这表明Bmdhr基因转录起始位点上游-941~-1364nt区域可能存在负调控元件.

表1 不同长度的Bmdhr启动子活性

Table1 ActivitiesofdifferentlengthBmdhrpromoter9411455±85畅6331364

677±46畅733

2畅2 JHA对Bmdhr启动子活性的影响

pGL后使用保幼激素类似物3畅将0构basic建好质粒分别转染的报告质粒(ZR515)BmNpGL浓度为细胞-Bmdhr,转染-1364和0,1,2,4,64~5h和8μg/mL的完全培养基替换旧培养基.72h后检测LUC活性,并经空载体和总蛋白量矫正,结果见图1.当保幼激素类似物浓度为2,4,6μg/mL时,启动子的活性极显著增强(F=2畅382,P=0畅003<0畅01),分别是浓度为0时的2畅0,2畅1和1畅5倍;而当保幼激素类似物浓度为1μg/mL时,启动子活性显著减弱(F=0畅867,P=0畅021<0畅05),浓度为8μg/mL时,启动子的活性则极显著减弱(F=0畅019,P=0畅001<0畅

01).

图1 保幼激素类似物对Bmdhr启动子的活性影响Fig.1 EffectsofJHAonBmdhrpromoteractivities

1畅8,2畅8,1畅2,2畅2,2畅4倍;而浓度为4μg/mL的条件下,启动子活性明显减弱(F=28畅012,P=0畅013<0畅05),仅是浓度为0μg/mL时的

80%.

图2Fig 20.2- OHEffects-ecdysone对promoterof20activities

-OHBmdhr-ecdysone启动子的活性影响

onBmdhr

2畅4 滞育激素对Bmdhr启动子活性的影响

pGL后用滞育激素浓度为3畅将0构basic建好质粒分别转染的报告质粒0做对照BmNpGL,10,20,40,60,80细胞-Bmdhr,转染-13644~5和和h100nM的完全培养基替换旧培养基.72h后收集细胞,检测LUC活性,并经空载体和总蛋白量矫正,结果见图3,当滞育激素浓度为10,20,40nM时,启动子的活性显著增强(F=9畅442,P=0畅037<0畅05),分别是浓度为0的1畅7,2畅3和1畅5倍;而当滞育激素浓度为60,80和100nM时,启动子活性变化不显著(F=0畅491,P=0畅522>0畅

05).

图3 滞育激素对Bmdhr启动子的活性影响Fig.3 EffectsofDHonBmdhrpromoteractivities

3 讨论

家蚕滞育激素受体基因的表达具有时空特异

[6]

本实验克隆了2个性,它与家蚕滞育密切相关.

不同长度的Bmdhr启动子片段,经对体外细胞瞬时表达分析,Bmdhr基因转录起始位点上游-1364~-941nt区间存在负调控元件.在线软件(http://alggen.lsi.upc.es/recerca/menu-recerca.html)和DNAstar软件分析显示,1364bp的Bmdhr启动子片段包含启动子基本元件如TATAbox、GA-[3] 顾燕燕,华荣胜,周耐明,等.家蚕滞育激素受体基

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元件对果蝇某些基因在转录水平有抑制作用[14]

,由此可推测En元件对Bmdhr基因的表达也有抑制作用,但这还需进一步实验证实.

在家蚕发育过程中,蜕皮激素单独作用能引起

幼虫到蛹的变态[15]

.蛹期初期,在家蚕正常雌蛹血

淋巴中蜕皮激素的浓度急骤增加[16]

,并且Bmdhr

在此时的转录水平急速上升[6,17]

,这说明蜕皮激素可能会增强OHBmdhr启动子的活性.但是,当20不但没有增强反而呈下降趋势-ecdysone为4μg/mL时,Bmdhr,其原因则有待进一启动子的活性-步地深入研究量效应DH,其浓度在对Bmdhr.

10启动子活性的影响同样具有剂~40nM时,可显著增强启动子活性;当浓度达到60nM时,启动子活性变化不显著.这种剂量效应与滞育激素对海藻糖酶基因启

动子调控作用[18]

是吻合的.

本研究结果为探索Bmdhr基因的表达调控和阐明家蚕滞育的分子机理积累了实验数据.但是,家蚕体内Bmdhr基因的真实表达调控情况,还需要在个体水平加以深入研究才能揭示.

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(责任编辑:缪文桦)

[17] 

昆虫激素体外调节家蚕滞育激素受体基因的表达

作者:作者单位:

王力刚, 朱娟, 王猛, 唐顺明, 沈兴家, Wang Ligang, Zhu Juan, Wang Meng,Tang Shunming, Shen Xingjia

王力刚,朱娟,王猛,Wang Ligang,Zhu Juan,Wang Meng(江苏科技大学,江苏镇江,212018), 唐顺明,沈兴家,Tang Shunming,Shen Xingjia(江苏科技大学,江苏镇江212018; 中国农业科学院蚕业研究所农业部蚕桑遗传改良重点实验室,江苏镇江212018)江苏科技大学学报(自然科学版)

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引用本文格式:王力刚. 朱娟. 王猛. 唐顺明. 沈兴家. Wang Ligang. Zhu Juan. Wang Meng. Tang Shunming. Shen Xingjia 昆虫激素体外调节家蚕滞育激素受体基因的表达[期刊论文]-江苏科技大学学报(自然科学版)2013(4)


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